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北理工在生物傳感器的改造及應(yīng)用方面取得重要研究成果


  近日,,北京理工大學(xué)生命學(xué)院霍毅欣課題組在異丁醇生物傳感器的改造及應(yīng)用方面取得重要研究成果,,并分別發(fā)表于SCI一區(qū)頂級期刊《Metabolic Engineering》和Q1期刊《Microbial Cell Factories》?!禡etabolic Engineering》論文的第一作者為碩士生蔚歡及博士后陳振婭,,通訊作者為霍毅欣教授?!禡icrobial Cell Factories》論文的第一作者為碩士生蔚歡,,通訊作者為博士后陳振婭和霍毅欣教授。與此相關(guān)的蛋白純化新方法也發(fā)表于Q2期刊《Journal of Biotechnology》,,此論文的第一作者為博士后陳振婭和碩士生趙璐瑤,,通訊作者為霍毅欣教授。

  異丁醇作為性能優(yōu)異的高級醇,,有望成為新一代運輸燃料,。然而其生物合成的產(chǎn)量不足以滿足工業(yè)生產(chǎn)需求,因此需要篩選高產(chǎn)的宿主,。生物傳感器是合成生物學(xué)中的熱門元件,,通過設(shè)計和構(gòu)建生物傳感器,可以使細胞響應(yīng)自身小分子濃度的變化并輸出便于檢測的熒光蛋白信號,。生物傳感器結(jié)合FACS技術(shù)是一種簡單快速,,高通量篩選理想表型的有力工具,因而已經(jīng)被廣泛地應(yīng)用于高產(chǎn)菌株篩選和代謝途徑調(diào)控,。

圖1 基于生物傳感器的異丁醇高產(chǎn)菌株篩選

  北京理工大學(xué)生命學(xué)院的霍毅欣教授課題組針對異丁醇高產(chǎn)菌株篩選效率低的問題,,將假單胞菌中烷烴代謝途徑的轉(zhuǎn)錄因子BmoR應(yīng)用于大腸桿菌,以綠色熒光蛋白作為報告基因,,構(gòu)建了異丁醇生物傳感器系統(tǒng),。隨后,采用了最近興起的ARTP(常溫常壓等離子體誘變)技術(shù)進行了宿主突變庫的構(gòu)建,,進一步將生物傳感器系統(tǒng)與異丁醇生物合成途徑基因共表達(圖1),,并以綠色熒光信號篩選到了一株高產(chǎn)菌株。通過代謝途徑和發(fā)酵條件的優(yōu)化,,使其搖瓶產(chǎn)量達到14 g/L,,在生物反應(yīng)器中產(chǎn)量提高至56.5 g/L,為已報道的最高產(chǎn)量,。相關(guān)成果發(fā)表于二區(qū)期刊《Microbial Cell Factories》,,原文鏈接:https://doi.org/10.1186/s12934-019-1084-2

圖2 轉(zhuǎn)錄因子BmoR的蛋白質(zhì)工程改造

  野生型轉(zhuǎn)錄因子通??梢造`敏地響應(yīng)其信號分子濃度的變化,,從而調(diào)控基因表達,因此可以用作生物傳感器篩選高產(chǎn)菌株,,然而檢測范圍限制了它們在工業(yè)生產(chǎn)中的進一步應(yīng)用,。在前面的研究中發(fā)現(xiàn),BmoR生物傳感器對異丁醇的檢測范圍是0-40 mM(0-3 g/L),,在底物濃度達到40 mM(3 g/L)時響應(yīng)已經(jīng)達到了飽和,,因此無法用于鑒別更高產(chǎn)異丁醇的菌株?;诖?,該課題組利用蛋白質(zhì)工程的方法對轉(zhuǎn)錄因子BmoR進行了改造,首先通過易錯PCR的方法構(gòu)建了隨機突變文庫,,并結(jié)合序列比對,,定點突變和飽和突變的方法對分布在不同區(qū)域的單點突變進行了分析(圖2A)。隨后又進行BmoR蛋白的結(jié)構(gòu)模擬和底物對接,,推測了三個底物異丁醇的結(jié)合位點并進行突變驗證(圖2B),。最終在單點突變的基礎(chǔ)上構(gòu)建了包含N端和C端兩個功能域的組合突變,達到了理想的性能,并通過發(fā)酵實驗驗證了突變體對胞內(nèi)異丁醇的響應(yīng),。相比于野生型BmoR,,突變體的對底物異丁醇的檢測范圍有了明顯的提升(0-100 mM),可以用于篩選7.4 g/L以上的異丁醇高產(chǎn)菌株,。該研究既詳細地解析了BmoR蛋白的結(jié)構(gòu)域和作用機理,,也為轉(zhuǎn)錄因子從生理意義到工業(yè)化應(yīng)用提供了范例。相關(guān)成果發(fā)表于頂級期刊《Metabolic Engineering》,,原文鏈接: https://doi.org/10.1016/j.ymben.2019.08.015,。

圖3 大腸桿菌中CipA-DnaB-eGFP PCIs聚集的亞細胞結(jié)構(gòu)

圖4 蛋白純化方法的原理圖

  蛋白質(zhì)在生物體中發(fā)揮重要作用,為了探索所需蛋白質(zhì)的特性,,蛋白質(zhì)純化是最基本和首要的步驟,。另外,在體外酶催化過程中,,酶純化是確保酶純度和提高反應(yīng)速率,、降低目標產(chǎn)物的生產(chǎn)成本的必要步驟。迄今為止,,已經(jīng)建立了各種利用不同標簽的蛋白質(zhì)純化方法,,包括親和標簽、自聚集標簽以及自切割標簽,。但現(xiàn)有的純化方法操作復(fù)雜,、成本較高或純化效率低。因此,,該課題組開發(fā)了一種依賴于內(nèi)含肽Ssp DnaB和疏水蛋白CipA的新型純化策略,。CipA可以自發(fā)組裝成蛋白質(zhì)結(jié)晶包涵體(PCI),Ssp DnaB是一種在弱酸條件下C-端可發(fā)生自切割的小內(nèi)含肽,。通過將Ssp DnaB的C-端融合靶蛋白且N-端融合CipA并使該融合體在大腸桿菌體內(nèi)過表達,。利用CipA的自聚集特性和內(nèi)含肽的自切割的特性,僅需細胞破碎,,離心和切割步驟即可完成蛋白純化,,大大提高了純化效率以及降低成本。該研究首先成功表達了融合蛋白CipA-DnaB-eGFP,,融合蛋白在細胞內(nèi)自聚集形成包涵體PCIs(圖3),,隨后將細胞破碎并離心后,得到CipA-DnaB-eGFP PCIs沉淀,,然后將PCIs沉淀物用pH="6.5的緩沖液重懸使內(nèi)含肽發(fā)生自裂解并釋放eGFP,,通過離心在上清液中得到純化后的可溶eGFP(圖4)。此外,,利用此方法又成功純化出MBP,,酮異戊酸脫羧酶(Kivd)和醇脫氫酶(AdhP),,這種方法有望成為工業(yè)生產(chǎn)蛋白質(zhì)的有利工具。相關(guān)成果發(fā)表于《Journal" of Biotechnology》,,原文鏈接:https://doi.org/10.1016/j.jbiotec.2019.06.002,。

 

 

附霍毅欣教授簡介:

  霍毅欣教授曾經(jīng)在法國巴斯德研究所、美國加州大學(xué)洛杉磯分校等歐美科研院校和生物公司學(xué)習(xí)和工作十三年,,兼有在學(xué)術(shù)界從事基礎(chǔ)研究和工業(yè)界開展應(yīng)用轉(zhuǎn)化研究的經(jīng)歷,。2016年起在北京理工大學(xué)組建代謝工程課題組,圍繞著“天然資源的微生物精煉與制造”,,以“人工細胞工廠的設(shè)計-構(gòu)建-篩選-放大”為主線,以多種模式生物為研究對象,,開展了一系列研究,,取得了多項研究成果。自2018年以來以通訊作者或第一作者身份在頂級期刊Nature Communications(1篇),、Metabolic Engineering(1篇),、Applied Microbiology and Biotechnology(3篇)、Current Opinion in Biotechnology(1篇)及重要期刊ACS Synthetic Biology(1篇),、Microbial Cell Factories(2篇),、Engineering(1篇)、Journal of Biotechnology (1篇),、JoVE(1篇)上發(fā)表論文,,申請多項發(fā)明專利。

  

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